e-ISSN: 2446-4775 | ISSN: 1808-9569

Contribuindo para o conhecimento científico sobre Pesquisa, Desenvolvimento e Inovação em biodiversidade e saúde.

Capa Revista Fitos

Seja um assinante Fitos

Assine a Revista Fitos e receba os lançamentos em seu email.

Assinar

  • Resumo

    O extrato metanólico das folhas de Schinopsis brasiliensis apresentou atividade antimicrobiana com Concentração mínima inibitória de 31,15 µg/mL frente Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis e Staphylococcus saprophyticus. A prospecção fitoquímica das folhas de Schinopsis brasiliensis (Engl.) guiado pelo método bioautográfico permitiu isolar duas moléculas (galato de metila - GM and β-1,2,3,4,6-PentaGaloil-D-Glicose - PGG), as quais apresentaram atividade antimicrobina frente S. aureus, Staphylococcus coagulase negativo e Enterococcus faecalis, com halos de ordem de 14 a 20 mm. Ainda, PGG apresentou atividade antimicrobiana frente Pseudomonas aeruginosa com halos da ordem de 21 mm e GM com halos de ordem de 17 a 18 mm frente Escherichia coli. Novos estudos, tais como a quantificação dos compostos antimicrobianos e identificação de outros metabólitos secundários das folhas de S. brasiliensis, são necessários pelos presentes resultados.

    Artigo

    Texto completo

    PDF
    HTML

    Palavras-chave

    β-1,2,3,4,6-Pentagaloil-D-Glicose;
    Staphylococcus aureus MRSA multirresistente
    Pseudomonas aeruginosa;
    Bioautografia.
  • Referências

    Singh AK, Venkatesh V, Singh RP, Singh M. Bacterial and antimicrobial resistance profile of bloodstream infections: A hospital‑based study. J Health Res. 2014; 1(3):140-144. [CrossRef]

    Saraiva AM, Saraiva CL, Gonçalves AM, Soares RR, Mendes FO, Cordeiro RP. Antimicrobial activity and bioautographic study of antistaphylococcal components from Caesalpinia pyramidalis Tull. Braz. J Pharm Sci. 2012; 48(1): 147-154. ISSN 2175-9790.

    Prado MCG, Barbosa DCA, Alves JLH. Aspecto Morfo-Estruturais da Unidade de Dispersão de Schinopsis brasiliensis Engl. “Baraúna” (Anacardiaceae). Bol Soc Brot. Coimbra. 1995; 67(2): 187-197. ISSN 0081-0657.

    Cardoso MP, David JM, David JP. A new alkyl phenol from Schinopsis brasiliensis. Nat Prod Res. 2005; 19(5):431-433. [CrossRef].

    Albuquerque UP, Medeiros PM, Almeida ALS, Monteiro JM, Lins Neto EMF, Melo JG et al. Medicinal plants of the caatinga (semi-arid) vegetation of NE Brazil: A quantitative approach. J Ethnopharmacol. 2007; 114(3):325–354. [CrossRef].

    Albuquerque UP. Re-examining hypotheses concerning the use and knowledge of medicinal plants: a study in the Caatinga vegetation of NE Brazil. J Ethnomed. 2006; 2:30. [CrossRef].

    Almeida CFCBR, Silva TCL, Amorim ELC, Maia MBS, Albuquerque UP. Life strategy and chemical composition as predictors of the selection of medicinal plants from the Caatinga (Northeast Brazil). J Arid Environ. 2005; 62(1):127-142. [CrossRef].

    Saraiva AM, Castro RHA, Cordeiro RP, Peixoto Sobrinho TJS, Castro VTNA, Amorim ELC et al. In vitro evaluation of antioxidant, antimicrobial and toxicity properties of extracts of Schinopsis brasiliensis Engl. (Anacardiaceae). Afr J Pharm Pharmacol. 2011; 5:1724-1731. ISSN 1996-0816.

    Souza ON. Chemical Constituents of the Leaves of Schinopsis brasiliensis. 1990. These of Phylosophy Doctor. The Polytechnic of North London. London. 207p.

    Moreira BO. Estudo fitoquímico e avaliação da atividade antioxidante dos extratos hexânicos e diclorometânico das folhas de Schinopsis brasiliensis Engl. (Anacardeaceae). 2009. 103p. Dissertação de Mestrado. Instituto de Química. Universidade Federal da Bahia, Salvador. [Link].

    Cardoso MP. Contribuição ao estudo fitoquímico de Schinopsis brasiliensis (Anacardiaceae). 2001. 106p. Dissertação de Mestrado. [Programa de pós-graduação em Química], Instituto de Química, Universidade Federal da Bahia, Salvador.

    Santos CCS, Masullo M, Cerulli A, Mari A, Estevam CS, Pizza C, Piacente S. Isolation of antioxidant phenolics from Schinopsis brasiliensis based on a preliminary LC-MS profiling. Phytochem. 2017; 140:45-51. [CrossRef].

    Brasil. MME (Ministério de Minas e Energia). Diagnóstico do município de Mirandiba. Disponível em: [Link]. Acesso em: 15 ago. 2019.

    Yao L, Jlang Y, Datta N, Singanusong R, Liu X, Duan J. HPLC analyses of flavanols and phenolic acids in the fresh young shoots of tea (Camellia sinensis) grown in Australia. Food Chem. 2004; 84:253-263. [CrossRef].

    CLSI - Clinical Laboratory Standards Institute. Metodologia dos testes de sensibilidade a agentes antimicrobianos por diluição para bactéria de crescimento aeróbico. 6ª ed. M7-A6. 2003; 23(2):49. [Link].

    Pessini GL, Holetz FD, Sanches NR, Cortez DA, Dias Filho BP, Nakamura CV. Avaliação da atividade antibacteriana e antifúngica de extratos de plantas utilizadas na medicina popular. Rev Bras Farmacogn. 2003; 13(suppl.1):21-24. ISSN 0102-695X.

    Sakagami Y, Linuma M, Piyasema KGNP, Dharmaratne HRW. Antibacterial activity of -mangostin agins vancomycin resistant Enterococci (VRE) and synergism with antibiotics. Phytomedicine. 2005; 12(3):203-208. [CrossRef].

    CLSI - Clinical Laboratory Standards Institute. Padronização dos testes de sensibilidade a antimicrobianos por disco-difusão – Norma M2-A8. 8ª ed. ANVISA/MS – CLSI, 2003. [Link].

    Cho JY, Sohn MJ, Lee J, Kim WG. Isolation and identification of pentagalloylglucose with broad-spectrum antibacterial activity from Rhus trichocarpa Miquel. Food Chem. 2010; 123: 501-596. [CrossRef].

    Cannell RJP, Farmer P, Walker JM. Purification and characterization of pentagalloylglucose, an α-glucosidase inhibitor/antibiotic from the freshwater green alga Spirogyra varians. Biochem J. 1988; 255:937-941. [CrossRef].

    Söhretoglu D, Sakar MK, Sabuncuoglu SA, Özgünes H, Sterner O. Polyphenolic Constituents and Antioxidant Potential of Geranium stepporum Davis. Rec Nat Prod. 2001; 5(1):22-28. ISSN 1307-6167.

    Beretta G, Artali R, Caneva E, Facino RM. Conformation of the tridimensional structure of 1,2,3,4,6-pentagalloyl-β-D-glucopyranose (PGG) by 1H NMR, NOESY and theoretical study and membrane interaction in a simulated phospholipid bilayer: a first insight. Magn Reson Chem. 2011; 49:132-136. [CrossRef].

    Khanbabaee, K.; Lötzerich, K. Efficient Total Synthesis of the Natural Products 2,3,4,6-Tetra-O-galloyI-D-glucopyranose, 1,2,3,4,6-Penta-O-galloyl-β-D-glucopyranose and the Unnatural 1,2,3,4,6-Penta-O-galloyl-α-D-glucopyranose. Tetrahedron. 1997; 53:10725-10732. [CrossRef].

    Moura ACS, Vilegas W, Santos LC. Identificação de alguns constituintes químicos de Indigofera hirsuta linn. (Fabaceae) por CLAE-IES-EM (TOF) e avaliação da atividade antirradicalar. Quim Nova. 2011; 34(7):1136-1140. ISSN 0100-4042.

    Alves TMA, Silva AF, Brandão M, Grand TSM, Smônia FA, Smânia Jr. A et al. Biological Screening of Brazilian Medicinal Plants. Rev Mem Inst Oswaldo Cruz. 2000; 95: 367-373. ISSN 1678-8060.

    Roux DG, Paulus E. Condensed Tannins - The isolation and distribution of interrelated heartwood components of Schinopsis spp. Biochem J. 1961; 78:785-789. [PubMed].

    Araújo TAS, Alencar NL, Amorim ELC, Albuquerque UP. A new approach to study medicinal plants with tannins and flavonoids contents from the local knowledge. J Ethnopharmacol. 2000; 120:72–80. [CrossRef].

    Bylka W, Matlawska I, Pilewski NA. Natural Flavonoids as Antimicrobial Agents. J Am Nutr Assoc. 2004; 7(2): 24-31. [Link].

    Vatten DA, Shetty K. Biological functionality of ellagic acid: review. J Food Biochem. 2005; 29: 234-266. [CrossRef].

    Akiyama H, Fuji K, Yamasaki O, Oono T, Iwatsuki K. Antibacterial action of several tannins against Staphylococcus aureus. J Antimicrob Chemother. 2001; 48:487-491. [CrossRef].

    Virtuoso S, Davet A, Dias JFG, Cunico MM, Miguel MD, Oliveira AB et al. Estudo preliminar da atividade antibacteriana das cascas de Erythrina velutina Willd., Fabaceae (Leguminosae). Rev Bras Farmacogn. 2005; 15: 137-142. ISSN 1981-528X

    Carvalher-Machado SC, Rosas EC, Brito FA, Heringe AP, Oliveira RR, Kaplan MAC et al. The anti-allergic activity of the acetate fraction of Schinus terebinthifolius leaves in IgE induced mice paw edema and pleurisy. Int Immunopharmacol. 2008; 8: 1552–1560. [CrossRef].

    Zhang J, Li L, Kim S, Hagerman AE, Lü J. Anti-cancer, anti-diabetic and other pharmacologic and biological activities of penta-galloyl-glucose. Pharm. Res., 2009; 26: 2066. [CrossRef].

    Chai Y, Lee HJ, Shaik AA, Nkhata K, Xing C, Zhang J et al. Penta-O-Galloyl-β-D-glucose induces G1 arrest and DNA replicative S-phase arrest independently of P21 cyclin-dependent kinase inhibitor 1A, P27 cyclin-dependent kinase inhibitor 1B and P53 in human breast câncer cells and is orally active against triple-negative xenograft growth. Breast Cancer Res. 2010; 12: R67. [CrossRef].

    Huh J, Lee E, Kim M, Kang S. Penta - O -galloyl-beta- D -glucose suppresses tumor growth via inhibition of angiogenesis and stimulation of apoptosis: roles of cyclooxygenase-2 and mitogen-activated protein kinase pathways. Carcinosenesis. 2005; 26(8): 1436-1445. [CrossRef].

    Zaidi-Yahiaoui R, Zaidi F, Bessai AA. Influence of gallic and tannic acids on enzymatic activity and growth of Pectobacterium chrysanthemi (Dickeya chrysanthemi bv. chrysanthemi). Afr J Biotechnol. 2008; 7(4): 482-486. ISSN 1684-5315.

  • Histórico do artigo

    • Data de submissão:
    • Data de publicação:
  • Licença


    Copyright (c) 2020 Revista Fitos
Feedback