Eficácia da Cordia salicifolia Cham (Boraginaceae) contra o biofilme de Enterococcus faecium

Karolayne Piedade Camargos
OrcID
Karina Ferrazzoli Devienne Vicentine
OrcID
Thaís Soares Farnesi de Assunção
OrcID
Thais Vilela de Almeida Silveira
OrcID
Sthefânia Dalva da Cunha Rezende
OrcID
Adriana Gonçalves de Oliveira
OrcID

    Karolayne Piedade Camargos

    Universidade Federal do Triângulo Mineiro

    OrcID https://orcid.org/0000-0002-5917-4238

    Mestranda em Biociências na Universidade Federal do Triângulo Mineiro (UFTM), bolsista CNPq, Biomédica pela UFTM e Técnica em Computação Gráfica pelo Instituto Federal do Triângulo Mineiro (IFTM), com experiência em pesquisa e extensão nas áreas de Microbiologia e Bioinformática. Durante a graduação, integrou por aproximadamente dois anos grupos de pesquisa em Microbiologia e em Bioinformática e Ciências Ômicas, ambos da UFTM, tendo apresentado trabalhos em eventos científicos nacionais, incluindo premiação em 1 lugar no Evento Nacional de Extensão. Possui experiência na organização de eventos científicos, além de estágios no Hospital das Clínicas da UFTM e na Perícia Criminal da Polícia Civil de Minas Gerais. Detém sólida habilidade em raciocínio lógico-matemático, elaboração e aplicação de metodologias científicas, comunicação escrita e verbal, além de características como pontualidade, proatividade e responsabilidade.

    Karina Ferrazzoli Devienne Vicentine

    Universidade Federal do Triângulo Mineiro

    OrcID https://orcid.org/0000-0002-9390-9517

    Possui graduação em Farmácia Bioquímica pela Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho (1997), mestrado em Biotecnologia pela Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho (2000) e doutorado em Biotecnologia pela Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho (2004). Exerce o cargo de Professora Titular da Universidade Federal do Triângulo Mineiro (UFTM), ministrando a disciplina de Farmacologia para os cursos de Medicina, Biomedicina e Nutrição e a disciplina de Plantas Medicinais e Fitoterápicos para cursos da área da saúde. Tem experiência na área de produtos naturais, cultura celular in vitro, com ênfase em mecanismos de citotoxicidade e morte celular (apoptose/necrose). Atua na área de fitoterapia pesquisando os seguintes temas: atividade de plantas medicinais sobre atividade citotóxica, antitumoral e antioxidante in vitro.

    Thaís Soares Farnesi de Assunção

    Universidade Federal do Triângulo Mineiro

    OrcID https://orcid.org/0000-0003-3415-9004

    Graduada em Biomedicina pela Universidade de Uberaba (2008). Mestre (2011) em Ciências Fisiológicas (área Imunologia, Parasitologia e Microbiologia) e Doutora (2018) em Medicina Tropical e Infectologia (áreas Imunologia e Parasitologia Aplicadas) ambos títulos pela Universidade Federal do Triângulo Mineiro. Servidora pública federal e pesquisadora-colaboradora nos Laboratórios de Imunologia, Parasitologia, Interações Celulares e Estudos Farmacológicos. Atua como pesquisadora no campo de imunopatofisiologia de doenças infecciosas (especialmente Doença de Chagas, Leishmanioses, Toxoplasmose, Tuberculose e COVID-19) e imunomediadas. Também investiga a aplicação de nanoformulações/nanomateriais para tratamento e diagnóstico de diferentes patologias.

    Thais Vilela de Almeida Silveira

    Universidade Federal do Triângulo Mineiro

    OrcID https://orcid.org/0000-0001-9117-3828

    Possui graduação em Ciências Biológicas pela Universidade Federal do Triângulo Mineiro (2018). Mestranda em Ciências Fisiológicas (área de conventração: Imunologia, Parasitologia e Microbiologia) na mesma instituição. Atua em pesquisas na área de Microbiologia, com ênfase em Bacteriologia, atuando principalmente em resistência bacteriana a antimicrobianos.

    Sthefânia Dalva da Cunha Rezende

    Universidade Federal do Triângulo Mineiro

    OrcID https://orcid.org/0000-0003-1616-9743

    Nutricionista pela Uniatenas (2011), pós-graduada latu sensu em Nutrição Humana e Saúde pela UFLA (2013), especialista em Alimentos, Saúde e Nutrição pelo Instituto Cotemar (2015), Mestre em Ciência e Tecnologia dos Alimentos pelo IFTM Campus Uberaba/MG (2016). Doutoranda em Ciências Fisiológicas no PPGCF/UFTM/área de concentração Microbiologia de Alimentos. Funcionária Pública, trabalhou como Nutricionista RT da Atenção Básica/NASF, com atendimentos clínicos/domiciliares de 2018 a 2022, RT na área de Alimentação Escolar (UAN) de 2012 a 2017 em Monte Carmelo/MG. Foi docente no Centro Universitário do Cerrado Patrocínio (UNICERP) das disciplinas Ética profissional, Tecnologia de Alimentos, Dietoterapias I, II e III (2016-2021), e também docente da Fundação Carmelitana Mário Palmério (UNIFUCAMP) da disciplina de Nutrição e Esporte, saúde coletiva e saúde pública (2021-2022).

    Adriana Gonçalves de Oliveira

    Universidade Federal do Triângulo Mineiro

    OrcID https://orcid.org/0000-0003-4561-5503

    Possui graduação em Farmácia-Bioquímica (1989) e especialização em Microbiologia (1990) pela Universidade Federal de Alfenas (UNIFAL), mestrado (1994) e doutorado (2003) em Ciências Biológicas (Microbiologia) pela Universidade Federal de Minas Gerais (UFMG). Atualmente é Professora Associada da Disciplina de Microbiologia, do Instituto de Ciências Biológicas e Naturais, da Universidade Federal do Triângulo Mineiro (UFTM), onde atua desde 1996. Participa do programa de pós-graduação em Ciências Fisiológicas (mestrado e doutorado) e do programa de pós-graduação em Ciências da Saúde (mestrado e doutorado), ambos da UFTM, como docente e orientadora. Foi vice-coordenadora do curso de pós-graduação em Ciências Fisiológicas da UFTM, no período de 2010 a 2013. Foi Coordenadora do Núcleo de Desenvolvimento da Pesquisa e Tecnologia da UFTM e Coordenadora Institucional do Programa Ciência sem Fronteiras (2013 a 2015). Tem experiência na área de Microbiologia, com ênfase em Bacteriologia, atuando principalmente nos seguintes temas: Helicobacter pylori, resistência bacteriana a antibióticos e infecção hospitalar por bactérias multirresistentes.

Keywords

Biofilme
Cordia salicifolia
Enterococcus faecium
Plantas medicinais
Vancomicina

Abstract

Enterococcus faecium apresenta resistência às principais classes de antimicrobianos, sendo essencial a descoberta de novas opções terapêuticas. Um dos mecanismos que promove resistência à ação de antimicrobianos é o biofilme. O objetivo deste estudo foi avaliar a eficácia da Cordia salicifolia Cham (Boraginaceae), uma planta medicinal popular no Brasil, sobre o biofilme de E. faecium. Foram avaliados isolados de E. faecium (n=12) obtidos de pacientes hospitalizados. O perfil de sensibilidade a antimicrobianos foi determinado. A atividade antibacteriana dos extratos aquoso e etanólico, obtidos das folhas e talos da planta, foi avaliada pela determinação da concentração inibitória mínima e a atividade sobre o biofilme foi avaliada pelo método de quantificação de biomassa por cristal violeta, após 24 horas de incubação na presença dos extratos. A maioria dos isolados foi classificada como forte produtora de biofilme (83,3%) e apresentou resistência à vancomicina (91,6%), ampicilina (91,6%), gentamicina (83,3%) e estreptomicina (50%). Não foi observada inibição do crescimento ou do biofilme pelos extratos de C. salicifolia, apesar do uso de concentração igual a dose tóxica para macrófagos. Concluindo, os extratos, aquoso e etanólico de C. salicifolia não apresentam atividade antibacteriana e nem anti-biofilme sobre isolados clínicos de E. faecium.

References

  1. García-Solache M, Rice LB. The Enterococcus: a Model of Adaptability to Its Environment. Clin Microbiol Rev [Internet]. 2019 Mar 20; 32(2): e00058-18. [acesso em: 1 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1128/cmr.00058-18].
  2. [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30700430/].
  3. Gao W, Howden BP, Stinear TP. Evolution of virulence in Enterococcus faecium, a hospital-adapted opportunistic pathogen. Current Opin Microbiol. 2018 Feb; 41: 76–82. [acesso em: 1 nov. 2024] [https://doi.org/10.1016/j.mib.2017.11.030] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29227922/].
  4. Zhou X, Willems RJL, Friedrich AW, Rossen JWA, Bathoorn E. Enterococcus faecium: from microbiological insights to practical recommendations for infection control and diagnostics. Antimicr Resist Infect Control. 2020 Aug 10; 9(1): 130. [acesso em: 7 nov. 2024] [https://doi.org/10.1186/s13756-020-00770-1] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32778149/].
  5. Gorrie C, Higgs C, Carter G, Stinear TP, Howden B. Genomics of vancomycin-resistant Enterococcus faecium. Microb Genom. 2019 Jul 1; 5(7): e000283. [acesso em: 7 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1099/mgen.0.000283] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31329096/].
  6. Tacconelli E, Carrara E, Savoldi A, Harbarth S, Mendelson M, Monnet DL, et al. Discovery, research, and development of new antibiotics: the WHO priority list of antibiotic-resistant bacteria and tuberculosis. Lancet Infect Dis [Internet]. 2018 Mar; 18(3): 318–27. [acesso em: 7 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1016/S1473-3099(17)30753-3] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29276051/].
  7. Lev K, Kunz Coyne AJ, Kebriaei R, Morrisette T, Stamper K, Holger DJ, et al. Evaluation of Bacteriophage-Antibiotic Combination Therapy for Biofilm-Embedded MDR Enterococcus faecium. Antibiotics. 2022 Mar 15; 11(3): 392. [acesso em: 7 nov. 2024]. [https://doi.org/10.3390/antibiotics11030392] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35326855/].
  8. Srivastava S, Bhargava A. Biofilms and human health. Biotechnol Letters. 2015 Sep 19; 38(1): 1–22. [acesso em: 7 nov. 2024] [https://doi.org/10.1007/s10529-015-1960-] [8https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26386834/].
  9. Jaroš P, Timkina E, Michailidu J, Maršík D, Kulišová M, Kolouchová I, et al. Boswellic Acids as Effective Antibacterial Antibiofilm Agents. Molecules. 2022 Jun 13; 27(12): 3795. [acesso em: 7 nov. 2024] [https://doi.org/10.3390/molecules27123795] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35744925/].
  10. Duarte MCT. Atividade antimicrobiana de plantas medicinais e aromáticas utilizadas no Brasil. Construindo a história dos produtos naturais. Multiciência. 2006; 7: 46-77. [acesso em: 10 nov. 2024]. Disponível em: [http://plone.ufpb.br/nephf/contents/documentos/artigos/fitoterapia/atividade-antimicrobiana-de-plantas].
  11. Álvarez-Martínez FJ, Barrajón-Catalán E, Micol V. Tackling Antibiotic Resistance with Compounds of Natural Origin: A Comprehensive Review. Biomedicines. 2020 Oct 11; 8(10): 405. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.3390/biomedicines8100405] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33050619/].
  12. Cowan MM. Plant Products as Antimicrobial Agents. Clin Microbiol Rev. 1999 Oct 1; 12(4): 564–82. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1128/CMR.12.4.564] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10515903/].
  13. Lu L, Hu W, Tian Z, Yuan D, Yi G, Zhou Y, et al. Developing natural products as potential anti-biofilm agents. Chinese Medic. 2019 Mar 20; 14(1). [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1186/s13020-019-0232-2] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30936939/].
  14. Yong YY, Dykes GA, Choo WS. Biofilm formation by staphylococci in health-related environments and recent reports on their control using natural compounds. Critical Rev Microbiol. 2019 Feb 20; 45(2): 201–22. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1080/1040841X.2019.1573802] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30786799/].
  15. Nogueira TBSS, Nogueira RBSS, Silva DA, Tavares J, Lima EO, Pereira FO, et al. First Chemical Constituents from Cordia exaltata Lam and Antimicrobial Activity of Two Neolignans. Molecules. 2013 Sep 10; 18(9): 11086–99. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.3390/molecules180911086] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/24025457/].
  16. Sharma M, Mallubhotla S. Diversity, Antimicrobial Activity, and Antibiotic Susceptibility Pattern of Endophytic Bacteria Sourced From Cordia dichotoma L. Frontiers Microbiol. 2022 May 13; 13. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.879386] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/35633730/].
  17. Carvalho PM, Rodrigues RF, Christine A, Marques MM, Shimizu MT. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oil of Cordia verbenacea D.C. J Ethnopharmacol. 2004 Dec 1; 95(2-3): 297–301. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1016/j.jep.2004.07.028] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15507352/].
  18. Flora do Brasil 2020 [Internet]. Cordia salicifolia. Jardim Botânico do Rio de Janeiro. [acesso em: 05 fev. 2025]. Disponível em: [https://floradobrasil.jbrj.gov.br].
  19. Matias EFF, Alves EF, Silva MKN, Carvalho VRA, Coutinho HDM, Costa JGM. The genus Cordia: botanists, ethno, chemical and pharmacological aspects. Rev Bras Farmacogn. 2015 Sep; 25(5): 542–52. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1016/j.bjp.2015.05.012].
  20. Oliveira SR. Potencial antioxidante e efeito de preparações fitoterápicas de Cordia salicifolia sobre adipocinas. Uberaba. 2020. 66f. Dissertação de Mestrado [Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia de Materiais, área de concentração - Produtos Naturais e Sintéticos Bioativos] - Universidade Federal do Triângulo Mineiro, UFTM, Uberaba, MG. 2020. [acesso em: 10 nov. 2024]. Disponível em: [https://bdtd.uftm.edu.br/bitstream/123456789/1273/1/DISSERT%20SIMONE%20R%20OLIVEIRA.pdf].
  21. Franco ATM, et al. Comparação entre teste bioquímico clássico e o método da reação em cadeia da Polimerase (PCR) para identificação de estirpes de Enterococcus faecalis isoladas da cavidade oral. Salusvita. Bauru. 2012; 31(3): 191-202. [acesso em: 7 nov. 2024]. Disponível em: [https://secure.unisagrado.edu.br/static/biblioteca/salusvita/salusvita_v31_n3_2012_art_01.pdf].
  22. CLSI. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. [Internet]. Twenty-sixth Edition. CLSI document M100-Ed31. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2021. [acesso em: 13 nov. 2024]. Disponível em: [https://clsi.org/standards/products/microbiology/documents/m100/].
  23. Santos Filho LGA, Castro KNC, Pereira AML, Diniz FM. Detecção da atividade antibacteriana in vitro de compostos naturais à base de plantas: metodologia científica. [acesso em: 10 nov. 2024]. Disponível em: [https://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/item/206136/1/Comunicado-254-AINFO.pdf].
  24. Stepanović S, Vuković D, Dakić I, Savić B, Švabić-Vlahović M. A modified microtiter-plate test for quantification of staphylococcal biofilm formation. J Microbiol Meth. 2000 Apr; 40(2): 175–9. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1016/S0167-7012(00)00122-6] [https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/10699673/].
  25. Pavão DP e, Moraes FC, Ribeiro BLM, Costa FGR, Camara MBP. Capacidade de formação de biofilme por cepas bacterianas e ação antibiofilme do extrato de Lafoensia pacari (Lythraceae). Rev Fitos. 2021 Jun 30; 15(2): 153–65. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.32712/2446-4775.2021.1073].
  26. Jabbari SMS, Pormohammad A, Hashemi A, Lak P. Global prevalence of antibiotic resistance in blood-isolated Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium: a systematic review and meta-analysis. Infec Drug Resist. 2019 Sep; 12: 2713–25. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.2147/IDR.S206084].
  27. Gonçalves AL, Alves Filho A, Menezes H. Estudo comparativo da atividade antimicrobiana de extratos de algumas árvores nativas. Arq Inst Biol. 2005 Jul; 72(3): 353–8. [acesso em: 10 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1590/1808-1657v72p3532005].
  28. Lewis K. Riddle of Biofilm Resistance. Antimicrob Agents Chemother. 2001 Apr; Volume 45. [acesso em: 13 nov. 2024]. [https://doi.org/10.1128/aac.45.4.999-1007.2001].
  29. Silva MGV, Andrade JM, Moura FML, Medeiros AKA, Cordeiro GS, Melo NSS, et al. Resistência antimicrobiana e formação de biofilme de Enterococcus spp. isolados de queijo coalho. Medicina Veterinária (UFRPE). 2024 May 23; 18(1): 91–7. [acesso em: 13 nov. 2024]. DOI: https://doi.org/10.26605/medvet-v18n1-5879
  30. Santos TDSA, Meccatti VM, Pereira TC, Marcucci MC, Hasna AA, Valera MC, et al. Antibacterial Effect of Combinations of Salvia officinalis and Glycyrrhiza glabra Hydroalcoholic Extracts against Enterococcus spp. Coatings. 2023; 13: 1579. [acesso em: 13 nov. 2024]. [https://doi.org/10.3390/coatings13091579].
  31. Glasenapp Y, Cattò C, Villa F, Saracchi M, Cappitelli F, Papenbrock J. Promoting Beneficial and Inhibiting Undesirable Biofilm Formation with Mangrove Extracts. Int J Mol Sci. 2019; 20: 3549. [acesso em: 13 nov. 2024]. https://doi.org/10.3390/ijms20143549
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1.
Eficácia da Cordia salicifolia Cham (Boraginaceae) contra o biofilme de Enterococcus faecium. Rev Fitos [Internet]. 2026 Feb. 18 [cited 2026 Feb. 26];20:e1844. Available from: https://revistafitos.far.fiocruz.br/index.php/revista-fitos/article/view/1844
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