Efeito antibacteriano e anti-inflamatório tópico do extrato metanólico de Chenopodium ambrosioides L.

Nara Luana Ferreira Pereira; Pedro Everson Alexandre de Aquino; Eloiza Maria do Nascimento; Cícera Datiane de Morais Oliveira; Saulo Relison Tintino; Fernando Gomes Figueredo; Monalisa Ribeiro Silva; Helenicy Nogueira Holanda Veras; Ana Ruth Sampaio Grangeiro; Irwin Rose Alencar de Menezes

doi:10.5935/2446-4775.20150009

Efeito antibacteriano e anti-inflamatório tópico do extrato metanólico de Chenopodium ambrosioides L.

v. 9 n. 2 (2015)
101-112
05/06/2015
08/09/2015
https://doi.org/10.5935/2446-4775.20150009

Nara Luana Ferreira Pereira
Pedro Everson Alexandre de Aquino
Eloiza Maria do Nascimento
Cícera Datiane de Morais Oliveira
Saulo Relison Tintino
Fernando Gomes Figueredo
Monalisa Ribeiro Silva
Helenicy Nogueira Holanda Veras
Ana Ruth Sampaio Grangeiro
Irwin Rose Alencar de Menezes

Palavras-chave

Chenopodium ambrosioides L.

Concetração Inibitória Mínima

Resumo

A utilização de plantas medicinais é uma prática comum nos países, fazendo parte da cultura popular como forma de tratamento de diferentes patologias. A planta Chenopodium ambrosioides L., conhecida popularmente como Mastruz, é utilizada na medicina popular no tratamento de bronquite crônica, tuberculose, contusões, hérnias e fraturas, tendo algumas atividades comprovadas cientificamente como ação vermífuga e antimicrobiana. Dessa forma, o presente estudo teve como objetivo avaliar o perfil químico e investigar a atividade antibacteriana, moduladora de antibióticos e antiedematogênica tópica e do extrato metanólico obtido das folhas de Chenopodium ambrosioides L. Na prospecção fitoquímica do extrato, foram verificados diferentes metabólitos que possuem várias atividades biológicas, e na dosagem dos fenóis totais foram verificados 21,0 mg/g equivalente de ácido gálico, sendo a quantificação de flavonoides encontrado um total de 135,4 mg/g de quercetina. Não houve atividade antibacteriana, porém detectou-se modulação quando o extrato foi associado aos aminoglicosídeos contra cepas de E. coli e Staphylococcus aureus. Nos testes para inflamação aguda, o extrato apresentou um potencial antiedematogênico. Nas concentrações de 25 e 50 mg/Kg. Diante dos resultados, pode-se correlacionar o conhecimento empírico das pessoas, às propriedades biológicas observadas nessa pesquisa, esta podendo ser importante para futura validação dessas propriedades etnomedicinais.

Referências

ALCARAZ, M.J.; CARVALHO, J.C.T. 2004. Flavonóides como agentes anti-inflamatórios. In: CARVALHO, J.C.T., Fitoterápicos anti-inflamatórios: Aspectos químicos, farmacológicos e aplicações terapêuticas, p. 79-100. Editora Tecmedd. São Paulo.
ANDÃšJAR, I.; RECIO, M.C.; BACELLI, T.; GINER, R.M.; RÍOS, J.L. 2010. Shikonin reduces edema induced by phorbol ester by interfering with IkBa degradation thus inhibiting translocation of NF-kB to the nucleus. British Journal of Pharmacology. v.160.n. 2. p. 376-388.
AZEVEDO, M.L. 2011. Perfil fitoquímico, atividades antioxidante e antimicrobiana de amora-preta (Rubus fruticosus) cv. Tupy em diferentes estádios de maturação cultivada em clima temperado. Tese (Doutorado). Universidade Federal de Pelotas.
BRASILEIRO, B.G.; PIZZIOLO, V.R.; RASLAN, D.S.; JAMAL, C.M.; SILVEIRA, D. 2006. Antimicrobial and cytotoxic activities screen in some Brazilian medicinal plants used in Governador Valadares district. Revista Brasileira de Ciências Farmacêuticas, v. 42, n. 2, p. 195-202.
CAETANO, N.; SARAIVA, A.; PEREIRA, R.; CARVALHO, D.; PIMENTEL, M.C.B., MAIA, M.B.S. 2002. Determinação de atividade antimicrobiana de extratos de plantas de uso popular como anti-inflamatório. Revista Brasileira de Farmacognosia. v.12. n.1. p. 132-135.
CALIXTO, J.B.; OTUKI, M.F.; SANTOS, A.R.S. 2003. Anti-inflammatory compounds f plant origin. Part I. action on arachidonic acid pathway, nitric oxide and nuclear factor КB (NF- КB). Planta Médica. p. v.69.p.973-983.
COUTINHO, H.D.M.; COSTA, J.G.M.; LIMA, E.O.; FALCÃO-SILVA, V.S.; SIQUEIRA-JUNIOR, J.P. 2009. In vitro interference of Momordica charantia and chlorpromazine in the resistance to aminoglycosides. Pharmaceutical Biology, v. 47, n. 11, p. 1056-1059.
DUARTE, M.C.T. 2006. Atividade antimicrobiana de plantas medicinais e aromáticas utilizadas no Brasil. Revista MultiCiência. v. 7, p. 17.
GÀBOR, M. 2000. Mouse Ear Inflammation Models and their Pharmacological Applications. Akadémiai Kiadó. Budapeste.
GÃ€BOR, M. 2003. Models of acute inflammation in the ear. In: WINYARD, P.G.; WILLOUGHBY, D.A. Inflammation protocols, p. 129-131. Humana Press. New Jersey.
GONÇALVES, A.; ALVES FILHO, A.; MENEZES, H. 2005. Estudo comparativo da atividade antimicrobiana de extratos de algumas árvores nativas. Arquivos do Instituto Biológico. v. 72, n. 3, p. 353-358.
GRASSI, L.T. 2011. Chenopodium ambrosioides L. - Erva de Santa Maria (Amaranthaceae): estudo do potencial anti-inflamatório, antinociceptivo e cicatrizante. Dissertação (Mestrado). Universidade do Vale do Itajaí.
HOLLEY, R.A.; PATEL, D. 2005. Improvement in shelf-life and safety of perishable foods by plant essential oils and smoke antimicrobials. Food Microbiology, v. 22, n. 4, p. 273-292.
JAVADPOUR, M.M.; JUBAN, M.M.; LO, W.C.; BISHOP, S.M.; ALBERTY, J.B.; COWELL, S.M.; BECKER, C.L.; MCLAUGHLIN, M.L. 1996. New antimicrobial peptides with low mammalian cell toxicity. Journal of Medicinal Chemistry, v.39, n.16, p. 3107-3113.
JESUS, R.S.; SANTOS, M.R.; RIGO, C.M.; SANTOS, T.S.S.; PAZ, M.B.; BRUM, T.F.; ZADRA, M.; BOLIGON, A. 2012. Avaliação da Atividade Antimicrobiana in vitro de Extratos da Planta Chenopodium ambrosioides L. técnica de cilindros em placas. 26º Simpósio de Ensino, Pesquisa e Extensão, Santa Maria.
LORENZI, H.; MATOS, F.J.A.; 2002. Plantas medicinais no Brasil: nativas e exóticas, Editora Instituto Plantarum. p. 512. Nova Odessa, São Paulo.
MARINS, A.K.; VIEIRA, D.F.; QUADROS, I.P.S.; PINHEIRO, P.F.; QUEIROZ, V.T.; COSTA, A.V. 2011. Prospecção fitoquímica das Partes Aéreas da erva-de-santa-maria (Chenopodium ambrosioides L). 15º Encontro Latino Americano de Iniciação Científica, 6º Encontro Latino Americano de Pós Graduação, 5º Encontro Latino Americano de Iniciação Científica Jr. São José dos Campos.
MATIAS, E.E.F.; SANTOS, K.K.A.; ALMEIDA, T.S.; COSTA, J.G.M.; COUTINHO, H.D.M. 2010. Enhancement of Antibiotic Activity by Cordia verbenacea DC. Latin American Journal of Pharmacy, v. 29, n. 6, p. 1049-1052.
MATOS, F.J.A. 1997. Introdução à Fitoquímica Experimental. 2ª Ed. Edições UFC. Fortaleza.
MATOS, J.A. 2011. Potencial biológico de Chenopodium ambrosoides L. (erva-de-santa-maria). Dissertação (Mestrado). Faculdade de Ciências da Saúde, Universidade Fernando Pessoa.
MURAKAWA, M.; YAMAOKA, K.; TANAKA, Y.; FUKUDA, Y. 2006. Involvement of tumor necrosis factor (TNF)-Î± in phorbol ester 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate (TPA) - induced skin edema in mice. Biochemical Pharmacology, v. 71. n. 9, p. 1331-1336.
MURARI, A.L.; CARVALHO, F.H.; HEINZMANN, B.M.; MICHELOT T.M.; HÖRNER, R.; MALLMANN, C.A. 2008. Composição e atividade antibacteriana dos essenciais de Senecio crassiflorus var. crassiflorus. Química Nova, v. 31, n.5. p. 1081-1084.
NADER, T.T. 2010. Potencial de atividade antimicrobiana in vitro de extratos vegetais do cerrado frente estirpes de Staphylococcus aureus. Dissertação (Mestrado). Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias, Universidade Estadual Paulista.
NCCLS. 2003. Nattinal Committee for Clinical Laboratory Standards. Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria that grow aerobically. 6 ed. Wayne, Pennsylvania.
RAUH, L.K. 2008. Avaliação da atividade anti-inflamatória tópica da Vernonia scorpioides (Lam) Persons em modelos de inflamação cutânea em camundongos. Dissertação (Mestrado). Universidade Federal do Paraná.
SÁ, R.D.; FERREIRA, M.R.A.; SANTANA, A.S.C.O.; SOARES, L.A.L.; RANDAU, K. P. 2012. Histoquímica e quantificação espectrofotométrica de flavonoides totais em folhas de Chenopodium ambrosioides L. 22º Simpósio de Plantas Medicinais no Brasil, Bento Gonçalves.
SADIK, C.D.; SIES, H.; SCHEWE, T. Inhibition of 15-lipoxygenases by flavonoids: structure-activity relations and mode of action. Biochemical Pharmacology, v. 65, p. 773-781, 2003.
SILVA, M. F. 2009. Escherichia coli e a resistência antibiótica: uma análise do padrão de evolução da resistência da Escherichia coli aos antibióticos no distrito de Castelo Branco. Dissertação (Mestrado). Faculdade de Ciências da Saúde, Universidade da Beira Interior, Covilhã.
SIMÕES, C.M.O.; SCHENKEL, E.P.; GOSMANN, G.; MELLO, J.C.P.; MENTZ, L.A.; PETROVICK, P.R. 2007. Farmacognosia da planta ao medicamento. Editora UFRGS, Porto Alegre.
SINGLETON, V.L.; ORTHOFER, R.; LAMUELARAVENTÓS, R.M. 1999. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteau reagent. Methods Enzymol, v. 299, p. 152-178.
SOUSA, C.M.M.; SILVA, H.R.; VIEIRA-JR, G.M.; AYRES, M.C.C.; COSTA, C.L.S.; ARAUJO, D.S.; CAVALCANTE, L.C.D.; BARROS, E.D.S.; ARAUJO, P.B.M.; BRANDÃO, M.S.; CHAVES, M.H. 2007. Fenóis totais e atividade antioxidante de cinco plantas medicinais. Química Nova, v. 30, n. 2. p. 351-355.
TERRACIANO, S.; AQUINO, M.; RODRIGUEZ, M.; MONTI, M.C.; CASAPULLO, A.; RICCIO, R.; GOMEZ-PALOMA, L. 2006. Chemistry and biology of anti-inflammatory marine natural products: molecules interfering with cyclooxygenase, NF-kappa B and other unidentified targets. Current Medicinal Chemistry, v. 13, n. 16. p. 1947-1969.
TUBARO, A.; DRI, P.; DELBELLO, G.; ZILLI, C.; DELLA-LOGGIA, R. 1985. The croton oil test revisited. Agents Actions, v. 17, p. 347-349.
WAGNER, H.; ULRICH-MERZENICH, G. 2009. Synergy research: approaching a new generation of phytopharmaceuticals. Phytomedicine, v. 16, n. 2, p. 97-110.
WOISKY, R.G.; SALATINO, A. 1998. Analysis of propolis: some parameters and procedures for chemical quality control. Journal Apicultural Research, v. 37, n. 2, p. 99-105.
ZHENG, Y.N.; ZHANG, J.; HAN, L.K.; SEKIYA, K.; KIMURA, Y.; OKUDA, H. 2005. Effects of compounds in leaves of Salix matsudana on arachidonic acid metabolism. Yakugaku Zasshi. v.125.n.12.p. 1005-1008.
ZUANAZZI, J.A.S.; MONTANHA, J.A. 2004. Flavonoides. In: SIMÕES, C.M.O. Farmacognosia: da planta ao medicamento. 5.ed. p. 577-614. Editora da UFRGS. Porto Alegre.

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Nara Luana Ferreira Pereira
UNIVERSIDADE ESTADUAL DO CEARÁ
Pedro Everson Alexandre de Aquino
UNIVERSIDADE FEDERAL DO CEARÁ
Eloiza Maria do Nascimento
FACULDADE LEÃO SAMPAIO
Cícera Datiane de Morais Oliveira
Universidade Regional do Cariri
Saulo Relison Tintino
UNIVERSIDADE REGIONAL DO CARIRI
Fernando Gomes Figueredo
UNIVERSIDADE REGIONAL DO CARIRI
Monalisa Ribeiro Silva
UNIVERSIDADE FEDERAL DO CEARÁ
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Ana Ruth Sampaio Grangeiro
FACULDADE LEÃO SAMPAIO
Irwin Rose Alencar de Menezes
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Efeito antibacteriano e anti-inflamatório tópico do extrato metanólico de Chenopodium ambrosioides L. Rev Fitos [Internet]. 8º de setembro de 2015 [citado 17º de novembro de 2024];9(2):101-12. Disponível em: https://revistafitos.far.fiocruz.br/index.php/revista-fitos/article/view/236

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7. GRATUIDADE - A cessão e autorização dos direitos indicados e estabelecidos neste Instrumento será gratuita, não sendo devida qualquer remuneração, a qualquer título, ao autor e/ou titular, a qualquer tempo.

[1] ALCARAZ, M.J.; CARVALHO, J.C.T. 2004. Flavonóides como agentes anti-inflamatórios. In: CARVALHO, J.C.T., Fitoterápicos anti-inflamatórios: Aspectos químicos, farmacológicos e aplicações terapêuticas, p. 79-100. Editora Tecmedd. São Paulo.

[2] ANDÃšJAR, I.; RECIO, M.C.; BACELLI, T.; GINER, R.M.; RÍOS, J.L. 2010. Shikonin reduces edema induced by phorbol ester by interfering with IkBa degradation thus inhibiting translocation of NF-kB to the nucleus. British Journal of Pharmacology. v.160.n. 2. p. 376-388.

[3] AZEVEDO, M.L. 2011. Perfil fitoquímico, atividades antioxidante e antimicrobiana de amora-preta (Rubus fruticosus) cv. Tupy em diferentes estádios de maturação cultivada em clima temperado. Tese (Doutorado). Universidade Federal de Pelotas.

[4] BRASILEIRO, B.G.; PIZZIOLO, V.R.; RASLAN, D.S.; JAMAL, C.M.; SILVEIRA, D. 2006. Antimicrobial and cytotoxic activities screen in some Brazilian medicinal plants used in Governador Valadares district. Revista Brasileira de Ciências Farmacêuticas, v. 42, n. 2, p. 195-202.

[5] CAETANO, N.; SARAIVA, A.; PEREIRA, R.; CARVALHO, D.; PIMENTEL, M.C.B., MAIA, M.B.S. 2002. Determinação de atividade antimicrobiana de extratos de plantas de uso popular como anti-inflamatório. Revista Brasileira de Farmacognosia. v.12. n.1. p. 132-135.

[6] CALIXTO, J.B.; OTUKI, M.F.; SANTOS, A.R.S. 2003. Anti-inflammatory compounds f plant origin. Part I. action on arachidonic acid pathway, nitric oxide and nuclear factor КB (NF- КB). Planta Médica. p. v.69.p.973-983.

[7] COUTINHO, H.D.M.; COSTA, J.G.M.; LIMA, E.O.; FALCÃO-SILVA, V.S.; SIQUEIRA-JUNIOR, J.P. 2009. In vitro interference of Momordica charantia and chlorpromazine in the resistance to aminoglycosides. Pharmaceutical Biology, v. 47, n. 11, p. 1056-1059.

[8] DUARTE, M.C.T. 2006. Atividade antimicrobiana de plantas medicinais e aromáticas utilizadas no Brasil. Revista MultiCiência. v. 7, p. 17.

[9] GÀBOR, M. 2000. Mouse Ear Inflammation Models and their Pharmacological Applications. Akadémiai Kiadó. Budapeste.

[10] GÃ€BOR, M. 2003. Models of acute inflammation in the ear. In: WINYARD, P.G.; WILLOUGHBY, D.A. Inflammation protocols, p. 129-131. Humana Press. New Jersey.

[11] GONÇALVES, A.; ALVES FILHO, A.; MENEZES, H. 2005. Estudo comparativo da atividade antimicrobiana de extratos de algumas árvores nativas. Arquivos do Instituto Biológico. v. 72, n. 3, p. 353-358.

[12] GRASSI, L.T. 2011. Chenopodium ambrosioides L. - Erva de Santa Maria (Amaranthaceae): estudo do potencial anti-inflamatório, antinociceptivo e cicatrizante. Dissertação (Mestrado). Universidade do Vale do Itajaí.

[13] HOLLEY, R.A.; PATEL, D. 2005. Improvement in shelf-life and safety of perishable foods by plant essential oils and smoke antimicrobials. Food Microbiology, v. 22, n. 4, p. 273-292.

[14] JAVADPOUR, M.M.; JUBAN, M.M.; LO, W.C.; BISHOP, S.M.; ALBERTY, J.B.; COWELL, S.M.; BECKER, C.L.; MCLAUGHLIN, M.L. 1996. New antimicrobial peptides with low mammalian cell toxicity. Journal of Medicinal Chemistry, v.39, n.16, p. 3107-3113.

[15] JESUS, R.S.; SANTOS, M.R.; RIGO, C.M.; SANTOS, T.S.S.; PAZ, M.B.; BRUM, T.F.; ZADRA, M.; BOLIGON, A. 2012. Avaliação da Atividade Antimicrobiana in vitro de Extratos da Planta Chenopodium ambrosioides L. técnica de cilindros em placas. 26º Simpósio de Ensino, Pesquisa e Extensão, Santa Maria.

[16] LORENZI, H.; MATOS, F.J.A.; 2002. Plantas medicinais no Brasil: nativas e exóticas, Editora Instituto Plantarum. p. 512. Nova Odessa, São Paulo.

[17] MARINS, A.K.; VIEIRA, D.F.; QUADROS, I.P.S.; PINHEIRO, P.F.; QUEIROZ, V.T.; COSTA, A.V. 2011. Prospecção fitoquímica das Partes Aéreas da erva-de-santa-maria (Chenopodium ambrosioides L). 15º Encontro Latino Americano de Iniciação Científica, 6º Encontro Latino Americano de Pós Graduação, 5º Encontro Latino Americano de Iniciação Científica Jr. São José dos Campos.

[18] MATIAS, E.E.F.; SANTOS, K.K.A.; ALMEIDA, T.S.; COSTA, J.G.M.; COUTINHO, H.D.M. 2010. Enhancement of Antibiotic Activity by Cordia verbenacea DC. Latin American Journal of Pharmacy, v. 29, n. 6, p. 1049-1052.

[19] MATOS, F.J.A. 1997. Introdução à Fitoquímica Experimental. 2ª Ed. Edições UFC. Fortaleza.

[20] MATOS, J.A. 2011. Potencial biológico de Chenopodium ambrosoides L. (erva-de-santa-maria). Dissertação (Mestrado). Faculdade de Ciências da Saúde, Universidade Fernando Pessoa.

[21] MURAKAWA, M.; YAMAOKA, K.; TANAKA, Y.; FUKUDA, Y. 2006. Involvement of tumor necrosis factor (TNF)-Î± in phorbol ester 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate (TPA) - induced skin edema in mice. Biochemical Pharmacology, v. 71. n. 9, p. 1331-1336.

[22] MURARI, A.L.; CARVALHO, F.H.; HEINZMANN, B.M.; MICHELOT T.M.; HÖRNER, R.; MALLMANN, C.A. 2008. Composição e atividade antibacteriana dos essenciais de Senecio crassiflorus var. crassiflorus. Química Nova, v. 31, n.5. p. 1081-1084.

[23] NADER, T.T. 2010. Potencial de atividade antimicrobiana in vitro de extratos vegetais do cerrado frente estirpes de Staphylococcus aureus. Dissertação (Mestrado). Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias, Universidade Estadual Paulista.

[24] NCCLS. 2003. Nattinal Committee for Clinical Laboratory Standards. Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria that grow aerobically. 6 ed. Wayne, Pennsylvania.

[25] RAUH, L.K. 2008. Avaliação da atividade anti-inflamatória tópica da Vernonia scorpioides (Lam) Persons em modelos de inflamação cutânea em camundongos. Dissertação (Mestrado). Universidade Federal do Paraná.

[26] SÁ, R.D.; FERREIRA, M.R.A.; SANTANA, A.S.C.O.; SOARES, L.A.L.; RANDAU, K. P. 2012. Histoquímica e quantificação espectrofotométrica de flavonoides totais em folhas de Chenopodium ambrosioides L. 22º Simpósio de Plantas Medicinais no Brasil, Bento Gonçalves.

[27] SADIK, C.D.; SIES, H.; SCHEWE, T. Inhibition of 15-lipoxygenases by flavonoids: structure-activity relations and mode of action. Biochemical Pharmacology, v. 65, p. 773-781, 2003.

[28] SILVA, M. F. 2009. Escherichia coli e a resistência antibiótica: uma análise do padrão de evolução da resistência da Escherichia coli aos antibióticos no distrito de Castelo Branco. Dissertação (Mestrado). Faculdade de Ciências da Saúde, Universidade da Beira Interior, Covilhã.

[29] SIMÕES, C.M.O.; SCHENKEL, E.P.; GOSMANN, G.; MELLO, J.C.P.; MENTZ, L.A.; PETROVICK, P.R. 2007. Farmacognosia da planta ao medicamento. Editora UFRGS, Porto Alegre.

[30] SINGLETON, V.L.; ORTHOFER, R.; LAMUELARAVENTÓS, R.M. 1999. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteau reagent. Methods Enzymol, v. 299, p. 152-178.

[31] SOUSA, C.M.M.; SILVA, H.R.; VIEIRA-JR, G.M.; AYRES, M.C.C.; COSTA, C.L.S.; ARAUJO, D.S.; CAVALCANTE, L.C.D.; BARROS, E.D.S.; ARAUJO, P.B.M.; BRANDÃO, M.S.; CHAVES, M.H. 2007. Fenóis totais e atividade antioxidante de cinco plantas medicinais. Química Nova, v. 30, n. 2. p. 351-355.

[32] TERRACIANO, S.; AQUINO, M.; RODRIGUEZ, M.; MONTI, M.C.; CASAPULLO, A.; RICCIO, R.; GOMEZ-PALOMA, L. 2006. Chemistry and biology of anti-inflammatory marine natural products: molecules interfering with cyclooxygenase, NF-kappa B and other unidentified targets. Current Medicinal Chemistry, v. 13, n. 16. p. 1947-1969.

[33] TUBARO, A.; DRI, P.; DELBELLO, G.; ZILLI, C.; DELLA-LOGGIA, R. 1985. The croton oil test revisited. Agents Actions, v. 17, p. 347-349.

[34] WAGNER, H.; ULRICH-MERZENICH, G. 2009. Synergy research: approaching a new generation of phytopharmaceuticals. Phytomedicine, v. 16, n. 2, p. 97-110.

[35] WOISKY, R.G.; SALATINO, A. 1998. Analysis of propolis: some parameters and procedures for chemical quality control. Journal Apicultural Research, v. 37, n. 2, p. 99-105.

[36] ZHENG, Y.N.; ZHANG, J.; HAN, L.K.; SEKIYA, K.; KIMURA, Y.; OKUDA, H. 2005. Effects of compounds in leaves of Salix matsudana on arachidonic acid metabolism. Yakugaku Zasshi. v.125.n.12.p. 1005-1008.

[37] ZUANAZZI, J.A.S.; MONTANHA, J.A. 2004. Flavonoides. In: SIMÕES, C.M.O. Farmacognosia: da planta ao medicamento. 5.ed. p. 577-614. Editora da UFRGS. Porto Alegre.