Ontogenia das cavidades secretoras de onze espécies de Myrtaceae

João Paulo Oliveira Ribeiro
Cleber José da Silva

    João Paulo Oliveira Ribeiro

    Cleber José da Silva

    Universidade Federal de São João Del-Rei, campus de Sete Lagoas. Rua Sétimo Moreira Martins, 188, Itapoã, CEP 35701-970, Sete Lagoas, MG, Brasil.

    Professor Associado da UFSJ. Licenciado em Ciências Biológicas e Bacharel em Ecologia pela UFRRJ (2000), Mestre em Botânica pela UFV (2007) e Doutor em Botânica pela UFV (2010). Coordenação de Implantação de Laboratórios de Anatomia Vegetal e Microscopia do CSL/UFSJ. Disciplinas ministradas na Graduação: Anatomia Vegetal, Botânica Aplicada e Sistemática Vegetal. Disciplina ministrada em Pós-Graduação (PPGCA/CSL/UFSJ): Anatomia Vegetal Aplicada à produção Vegetal. Áreas de pesquisa: Estruturas Secretoras em plantas: papel ecológico e funcional; Caracterização Morfoanatômica e Histoquímica de Hortaliças não convencionais; Caracterizção morfofisiológica de mudas de cagaiteira; Criação de protocolos alternativos de coloração para uso em anatomia vegetal; Poluição e seus efeitos em plantas. Anatomia Ecológica de plantas do cerrado. Administração Acadêmica: Coordenador de Curso de Graduação; Chefe e subchefe do DECEB/UFSJ; Membro de conselho superior (Conselho de Ensino, Pesquisa e Extensção da UFSJ).


Palavras-chave

Anatomia
Araçá
Epitélio secretor
Esquizolisigena

Resumo

Cavidades secretoras são constantemente citadas entre espécies da família Myrtaceae. As cavidades secretoras possuem origens diversas, podendo ser oriundas do afastamento de células (esquizógena), de morte celular programada (lisígena) ou da combinação destes dois processos (esquizolisígena). Este trabalho descreve a ontogenia das cavidades presentes nas folhas de onze espécies da família Myrtaceae. Foram utilizados ápices vegetativos de espécimes ocorrentes na região dos municípios de Itutinga e Sete Lagoas, Minas Gerais. As amostras foram fixadas em FAA70, estocadas em etanol 70%, desidratadas em série etílica e incluídas em metacrilato. Cortes transversais e longitudinais de 6 a 8 µm de espessura foram obtidos em micrótomo rotativo de avanço automático. Os cortes foram corados com Azul de Toluidina para caracterização estrutural. Lâminas permanentes foram montadas com resina sintética. As cavidades apontam para uma origem no meristema fundamental, apresentando paredes finas e citoplasma denso, e com intensa atividade de divisão celular, originando de forma precoce o epitélio secretor com células caracteristicamente achatadas. O afastamento das células no interior da cavidade ocorre conseguinte à formação do epitélio secretor. Ao final do processo de formação, as cavidades passam por um evento de apoptose, em que células do seu interior são degradadas, caracterizando a esquizolisigenia.

Referências

  1. Metcalfe CR, Chalk L. Anatomy of the Dicotyledons. vol. 2, Oxford: Clarendon Press, Oxford, 1957. 557p. ISBN: 9780198543831.
  2. Solereder H. Systematic anatomy of the Dicotyledons. Oxford: Clarendon Press, v.1, 1908. p.350-355.
  3. Fahn A. Secretory tissues in plants. London: Academic Press, 1979. 302p. ISBN: 0122476506.
  4. Ciccarelli D, Andreucci AC, Pagni AM. Translucent glands and secretory canals in Hypericum perforatum L. (Hypericaceae): morphological, anatomical and histochemical studies during the course of ontogenesis. Ann Bot. 2001; 88(4): 637-644. ISSN 0305-7364 [CrossRef].
  5. Kalachanis D, Psaras GK. Struture and development of the secretory cavities of Myrtus communis leaves. Biol Plant. 2005; 49(1): 105-110. ISSN 1435-8603. [CrossRef].
  6. Cury G, Appezzato-da-Glória B. Internal secretory spaces in thickened underground systems of Asteraceae species. Aust J Bot. 2009; 57(3): 229-239. ISSN 0067-1924. [CrossRef].
  7. Thadeo M, Meira RMSA, Azevedo AA, Araújo JMD. Anatomia e histoquímica das estruturas secretoras da folha de Casearia decandra Jacq. (Salicaceae). Rev Bras Bot. 2009; 32(2): 329-338. ISSN 0100-8404. [CrossRef].
  8. Gomes SMA, Lombardi JA. Leaf anatomy as a contribution to the taxonomy of Salacioideae N.Halle´ ex Thorne & Reveal (Celastraceae). Plant Syst Evol. 2010; 289 (2): 13-33. ISSN 21996881. [CrossRef].
  9. Tullii CF, Miguel EC, Lima NB, Fernandes KVS, Gomes VM, Cunha M. Characterization of stipular colleters of Alseis pickelii. Botany. 2013; 91(6): 403-413. ISSN 1480-3305. [CrossRef].
  10. Machado SR, Teixeira SP, Rodrigues TM. Bacterial leaf glands in Styrax camporum (Styracaceae): first report for the family. Botany. 2014; 92(5): 403-411. ISSN 1480-3305. [CrossRef].
  11. Fernandes VF, Thadeo M, Dalvi VC, Marquete R, Silva JXB, Pereira LJ et al. How to distinguish cavities from ducts in Casearia Jacq. (Salicaceae): Anatomical characterization and distribution. Flora. 2018; 240: 89-97. ISSN 0367-2530. [CrossRef].
  12. Luna BN, Freitas MDF, Barros CF. Diversidade de estruturas secretoras de folhas em cinco gêneros neotropicais de Primulaceae: aspectos ecológicos e significado evolutivo. Botany. 2018; 97(1): 35-51. ISSN 1480-3305. [CrossRef].
  13. Evert RF. Esau’s Plant anatomy. Meristems, cells, and tissues of the plant body – their structure, function, and development. 3ª ed. New Jersey: Wiley, 2006. 624p. ISBN: 978-0-471-73843-5.
  14. Paiva PSK, Teófilo FBS, Lima AKM, Cordoba BV, Miguel TBAR, Castro ME. Ontogenesis and secretion mechanism of Morinda citrifolia L. (Rubiaceae) colleters. S Afr. 2019; 121: 26-33. ISSN 1816-496X. [CrossRef].
  15. Monteiro WR, de Moraes Castro M, Fahn A, Caldeira W. Observations on the development of the foliar secretory cavities of Porophyllum lanceolatum (Asteraceae). Nord J Bot. 1995; 15(1): 69-76. ISSN 1756-1051. [CrossRef].
  16. Machado SR, Carmello-Guerreiro SM. Estrutura e desenvolvimento de canais secretores em frutos de Schinus terebentifolius Raddi (Anacardiaceae). Acta bot bras. 2001; 15(2): 189-195. ISSN 1677-941X. [CrossRef].
  17. Bennici A, Tani C. Anatomical and ultrastructural study of the secretory cavity development of Citrus sinensis and Citrus limon: evaluation of schizolysigenous ontogeny. Flora. 2004; 199(6): 464-475. ISSN 0367-2530. [CrossRef].
  18. WCSP - World Checklist of Selected Plant Families. Royal Botanic Gardens, Kew. [Link].
  19. BFG - The Brazil Flora Group. Brazilian Flora 2020: innovation and collaboration to meet Target 1 of the Global Strategy for Plant Conservation (GSPC). Rodriguésia. 2018; 69(4): 1513-1527. ISSN 2175-7860. [CrossRef].
  20. Fontenelle JB, Costa CG, Machado RD. Foliar anatomy and micromorphology of eleven species of Eugenia L. (Myrtaceae). Bot J Linn Soc. 1994; 115(2): 111-133. ISSN 0024-4074. [CrossRef]
  21. Coneglian IRM. Morfoanatomia de ovário, pericarpo e semente de sete espécies de Myrteae DC. (Myrtaceae). 166 fs. 2011. Botucatu. Tese de Doutorado [Programa de Pós-Graduação em Ciências Biológicas (Botânica)] Instituto de Biociências de Botucatu - Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho”, UNESP, Botucatu, SP. 2011. [Link].
  22. Pires CH, Paula JAMD, Tresvenzol LMF, Ferri PH, Fiuza TDS, Bara MTF. Composição química e atividade antimicrobiana dos óleos essenciais das folhas e flores de Callistemon viminalis (sol. ex Gaertn.) G. Don ex. Loudon (Myrtaceae). Rev Ciên Farm Bas Apl. 2013; 34(4): 597-601. ISSN 1808-4532. [Link].
  23. Victório CP, Azevedo AC, Silveira EGP, Souza MC, Sato A, Gama PE et al. Leaf essential oils and volatiles, histochemistry and micromorphology of Neomitranthes obscura (DC.) N. Silveira (Myrtaceae) growing in sandy coastal plains of Rio de Janeiro. Biochem Syst Ecol. 2018; 78: 66-76. ISSN 0305-1978. [CrossRef].
  24. Paula JA, Paula JR, Bara MT, Rezende MH, Ferreira HD. Pharmacognostic study about Pimenta pseudocaryophyllus (Gomes) L.R. Landrum leaves-Myrtaceae. Rev Bras Farmacogn. 2008; 18(2): 265-278. ISSN 0102-695X. [CrossRef].
  25. Retamales HA, Scherson R, Scharaschkin T. Foliar micromorphology and anatomy of Ugni molinae Turcz. (Myrtaceae), with particular reference to schizogenous secretory cavities. Rev Chil Hist Nat. 2014; 87(1): 27. ISSN 0716-078X. [CrossRef].
  26. Retamales HA, Cabello A, Serra MT, Scharaschkin T. Leaf micromorphology and anatomy of Myrceugenia rufa (Myrtaceae): An endemic coastal shrub of north-central Chile. Gayana Bot. 2015; 72(1): 76-83. ISSN 0016-5301. [CrossRef].
  27. List S, Brown PH, Walsh KB. Functional anatomy of the oil glands of Melaleuca alternifolia (Myrtaceae). Aust J Bot. 1995; 43(6): 629-641. ISSN 0067-1924. [CrossRef].
  28. Lorca GG, Amat AG, Gonzalez C. Análisis comparativo de caracteres diagnósticos para la identificación de tres especies argentinas de Myrtaceae empleadas en la medicina popular. Acta Farm Bon. 1995; 14(2): 81-86. ISSN 0326-2383. [Link].
  29. Gogosz AMG, Cosmo NL, Bona C, Souza LA. Morfoanatomia da plântula de Campomanesia xanthocarpa O. Berg. (Myrtaceae). Acta Bot Bras. 2010; 24(3): 613-623. ISSN 1677-941X. [CrossRef]
  30. Johansen DA. Plant microtechnique. London: McGraw Hill, 1940. 523p. ISBN: 9780011854670.

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Autor(es)

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1.
Ontogenia das cavidades secretoras de onze espécies de Myrtaceae. Rev Fitos [Internet]. 30º de setembro de 2021 [citado 13º de novembro de 2024];15(3):346-53. Disponível em: https://revistafitos.far.fiocruz.br/index.php/revista-fitos/article/view/1103

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